เทคนิคนี้น่าจะเป็นเรื่องง่ายๆ สำหรับคนที่อยู่ในวงการ molecular แต่สำหรับอีกหลายคนที่ยังไม่มีประสบการณ์อาจเป็นเรื่องวุ่นวายพอสมควร ในฐานะของคนที่ไม่มีประสบการณ์เรื่องนี้มาก่อนก็ขอบันทึกไว้ให้ผู้ที่ไม่มีประสบการณ์เหมือนๆกัน ได้เข้าใจขั้นตอนนี้ให้มากขึ้น
เทคนิคนี้น่าจะเป็นเรื่องง่ายๆ สำหรับคนที่อยู่ในวงการ molecular
แต่สำหรับอีกหลายคนที่ยังไม่มีประสบการณ์อาจเป็นเรื่องวุ่นวายพอสมควร
ในฐานะของคนที่ไม่มีประสบการณ์เรื่องนี้มาก่อนก็ขอบันทึกไว้ให้ผู้ที่ไม่มีประสบการณ์เหมือนๆกัน
ได้เข้าใจขั้นตอนนี้ให้มากขึ้น
1.
ทำไปทำไม?
ทำเพื่อตรวจสอบว่า เมื่อเราสกัด DNA
จากตัวอย่างตรวจแล้ว จะแน่ใจอย่างไรว่า ในหลอดทดลองที่เขาบอกว่ามี DNA
อยู่นั้น มี DNA อยู่จริง ก็ต้องพิสูจน์กันหน่อย
วิธีที่พิสูจน์เรื่องนี้น่าจะมีอยู่ 2 วิธีใหญ่ๆ คือ การ run
electrophoresis และการวัด OD ด้วย spectrophotometer
2.
แล้วไอ้สองวิธีนี้กันดีต่างกันยังไง?
วิธี electrophoresis จะได้ออกมาเป็น band
เทียบกับ marker เราก็จะรู้ว่า DNA ที่ได้มี molecular weigth เท่าไร
มีการแตกของเส้น DNA หรือไม่ (fragmentation) ถ้ามีการแตกของเส้น DNA
ก็จะมี band ขนาด MW เล็กลง หรือ band ที่ได้ อาจไม่คมชัด
หนักกว่านั้นก็เป็น smear ซึ่งหมายถึงมี DNA
ขนาดใกล้เคียงกันเกาะกันเป็นปื้น ทั้งหมดเรียกว่าคุณภาพของ
DNAไม่ดี สำหรับที่ดี คือควรได้ DNA ที่มี band
คมชัด ส่วนการวัด OD ด้วย spectrophotometer ที่ 260 nm
เป็นการวัดปริมาณ DNA ที่ค่อนข้างแม่นยำ โดย DNA 1 mg/ml จะวัด ODที่
260 nm ได้ = 20 แต่การวัดปริมาณด้วยวิธีนี้เป็นการบอกเพียงแค่ปริมาณ
ไม่ได้บอกคุณภาพของ DNA เหมือนวิธี electrophoresis อ้อ!
เกือบลืมไป จริงๆแล้ววิธี electrophoresis ก็สามารถคำนวณหาปริมาณของ
DNA ได้ โดยใช้ standard marker ที่รู้ความเข้มข้นของ marker แล้ววัด
intensity ของ band ที่ได้เทียบกับ standard ก็จะรู้ปริมาณของ DNA
(หลักการเดียวกับ Densitometer) แต่ปริมาณของ DNA โดยวิธีนี้
อาจไม่แม่นยำเท่ากับวิธีการวัดด้วย spectrophotometer
ส่วนใครจะใช้วิธีไหน ก็เลือกเอาตามสบายนะ
3. Gel
ที่ใช้มีกี่แบบ?
สำหรับการตรวจสอบ DNA นิยมใช้ 0.5 %
agarose gel (ที่นี่ใช้ Agarose Type I มันยังมี Agarose Type II
ซึ่งผมยังไม่รู้ว่าเขาใช้ต่างกันอย่างไร
ถ้ารู้แล้วค่อยมาบอกทีหลังก็แล้วกัน) ส่วน 2-2.5% agarose
นิยมใช้ในการ run PCR product หาก DNA มีขนาดเล็กมาก
เขาก็จะเปลี่ยนไปใช้ polyacrylamide gel แทน
4. แล้วทำไมไม่ใช้ agarose gel
สำหรับงาน DNA ที่มีขนาดเล็กล่ะ?
เรารู้ในหลักการว่า
DNAขนาดใหญ่จะวิ่งได้ช้า DNA ขนาดเล็กจะวิ่งได้เร็ว
ถ้าต้องการแยก DNA ขนาดเล็กให้มันวิ่งได้ช้าขึ้น
ก็เพิ่มความเข้มข้นของ gel ให้สูงขึ้น แต่ agarose gel
มีข้อจำกัดในการเตรียม กล่าวคือ ที่ความเข้มข้นมากกว่า 8 % gel
จะมีความแข็งมาก เตรียมให้ได้คุณภาพที่ดียาก ก็เลยเปลี่ยนไปใช้
polyacrylamide gel ซึ่งสามารถเตรียมที่ % สูงๆ ได้ดีกว่า
แม้กระทั่งที่ 20% ก็ยังไม่มีปัญหา
5.
ขั้นตอนการทำเป็นอย่างไร?
เริ่มแรกเตรียม 0.5% agarose gel (0.23g
agarose ใน 0.5% TAE buffer 45 ml ผมเตรียมเท่าที่พอใช้
ใครจะเตรียมมากกว่านี้ก็คำนวณเองนะ) ต้มใน microwave
(กะให้ได้อุณหภูมิ 80-90C ที่อุณหภูมิขนาดนี้
มันจะเริ่มเดือดเล็กๆพอเห็นเป็นฟอง ไม่ใช่เดือดพลั่กๆ)
เอามาทำให้เย็นโดยแช่น้ำให้ได้อุณหภูมิประมาณ 40-45C
ตรวจสอบโดยใช้มือจับแล้วรู้สึกว่าอุ่นน้อยๆ ที่เขาไม่เท gel
ตอนที่ยังร้อนอยู่เนื่องจากวัสดุที่ใช้ทำจากพลาสติก ถ้า gel ร้อนมากๆ
พลาสติกอาจงอได้ โดยเท gel ให้สูงประมาณ 5 mm ก่อน แล้วขยับให้ gel
ไหลไปทั่วทั้งเพลท แล้วจึงเทเพิ่มให้หมด เสียบ Comb แล้วรอให้
gel แข็ง (ประมาณ 20 นาที) ถอด Comb ออก เช็ดเอาเศษ gel
ที่เกาะบนเพลทออก หากยังไม่ใช้ก็เก็บไว้ใน 0.5% TAE buffer ได้
แต่หากจะใช้เลยก็เอาไปใส่ในเครื่อง electrophoresis ที่มี 0.5% TAE
buffer อยู่ สังเกตปริมาณ buffer ต้องท่วมเนื้อ gel
ผสม DNA กับสีย้อม โดยใช้อัตราส่วน 5:1 คือ DNA 5 ul
ต่อสีย้อม 1 ul ขั้นตอนนี้นิยมทำบนแผ่น paraffin โดยหยดสีย้อมเป็นจุดๆ
จุดละ 1 ul ให้เป็นแถวห่างๆกัน แล้วดูด DNA 5 ul เข้าไปผสม
แล้วดูดสารทั้งหมดเอามาหยอดใน well ทำเช่นนี้ไปจนหมด อ้อ! อย่าลืมหยอด
marker เข้าไปด้วยล่ะ เสร็จแล้ว ทำการ set เครื่อง electrophoresis
ที่นี่บังคับให้หันหัว gel (ด้านที่มีหลุมหยอดตัวอย่าง DNA)
ไปทางขวามือ เพราะฉะนั้นก็ set ให้ขั้วบวกอยู่ทางซ้าย
ขั้วลบอยู่ทางขวา DNA ก็จะวิ่งจากขั้วลบไปทางบวก set Voltage 100 V
เวลา 15 นาที (ตอนแรกผมใช้ 30 นาที senseiบอกว่า DNA band
ที่ไปมันไปทับกับแถบสี่ย้อม DNA พอดี ก็เลยลดเวลาลง) เสร็จแล้วเอาgel
ไปย้อมด้วย Ethidium bromide 10 นาที ก่อนจะนำไปเข้าตู้เปิดแสง UV
แล้วถ่ายรูป
5. gel ที่ทำเสร็จแล้ว
ถ่ายรูปแล้ว เอาไปไหน?
เท่าที่ผมรู้ บ้านเรานิยมเก็บไว้
เก็บทั้งรูปถ่าย เก็บทั้งแผ่น gel
จนสุดท้ายจบโปรเจคแล้วค่อยทิ้งกัน แต่ที่นี่เขาเอากลับมาใช้ใหม่
พอถ่ายรูปเสร็จเขาก็จะเอา gel ใส่ใน flask พอจะใช้เขาก็เอา gel ใน
flask นี้ไปต้ม แล้วเอามาเทเพลทใหม่ได้เลย ใช้ไปหลายครั้ง จนสีของ gel
มันเข้มจนรับไม่ได้แล้วค่อยเตรียมใหม่ ถ้าไม่ได้มาเห็นด้วยตาตัวเอง
รับรองยังไงก็เลือกเตรียมใหม่ ไม่กล้าใช้ gel เก่าหรอก
จบแล้ว.......
หมายเหตุ : ผมบันทึกจากที่ได้เรียนรู้ และซักถาม
ดังนั้นหากตกประเด็นใดไป หรือเหตุผลประกอบอาจไม่ถูกต้องครบถ้วน
ขอเชิญท่านผู้เชี่ยวชาญในงาน molecular ทั้งหลายช่วย comment
หรือให้เหตุผลประกอบที่ถูกต้องด้วย
เพื่อผู้ด้อยประสบการณ์ทั้งหลายเช่นผม จะได้เข้าใจ
และทราบเหตุผลที่แท้จริงครับ
หมายเหตุอีกครั้ง ใครรู้ช่วยบอกด้วยว่าเขาใส่
คำหลักในบันทึกกันอย่างไร ผมอ่านวิธีการแล้วไม่ค่อยเข้าใจ
ถูกใจจังเลย อยากให้มีการบันทึกประสบการณ์เรื่องที่ยากๆ แบบนี้ ให้คนอื่นได้เรียนรู้ด้วย เพราะเทคนิคทาง molecular แม้ทำตาม protocol ทุกขั้นตอน บางที่ก็ได้ผล บางทีไม่ได้ผล จึงคิดว่า คนที่ทำได้ดี คือทำแล้ว success เป็นส่วนใหญ่ น่าจะมี trick อะไรอยู่
ขออนุญาตเสริมด้วยประสบการณ์จาก Royal Perth Hospital lab ไว้เปรียบเทียบกันด้วยเลยค่ะ ดีด้วยที่เราได้ดูวิธีการของญี่ป่นเทียบกับฝรั่ง ซึ่งคิดว่าน่าสนใจเพราะญี่ปุ่นมีเอกลักษณ์อะไรดีๆที่น่าสนใจมากรวมทั้งวัฒนธรรมในการทำแล็บด้วย
1. เค้าวัด OD โดยไม่ run gel เลยสำหรับขั้นตอน extract DNA แต่วัดทั้ง OD260 และ 280 เพื่อดูการ contaminate ของโปรตีน
2. รู้สึกเค้ามักจะบอกว่า DNA 50 ug/ml จะวัด OD ได้ = 1 มากกว่าเพราะเวลาเราวัด OD ใน spectro ทั่วๆไปจะวัดใน range ที่ไม่เกิน 1 อันนี้แปลกดีนะคะ รู้สึกเพิ่งเคยเจอวิธีการบอกความเข้มข้น DNA จากการวัด spectro แบบนี้ (กลับกันกับฝรั่งเนาะ ตอนแรกอ่านแล้วงงๆ)
3. อยากรู้เหมือนกันนะคะ หาไม่เห็นเห็นจากเน็ทเรื่อง type I, type II agarose เพิ่งเคยได้ยิน ไม่ใช่เกรดมันใช่ไหมคะ
4. ที่เพิธเค้าใช้ 1% agarose ต่ำสุด ไม่ทราบเพราะเค้าประหยัดไม่เท่าหรือเปล่านะคะ
5. ที่เพิธเค้าจะผสม EtBr ลงไปใน agarose gel เลยตอนที่ละลายแล้วให้ได้ความเข้มข้น 0.5 ug/ml ซึ่งทำให้ไม่ต้องเสียเวลาย้อมทีหลัง
วิธีหันทิศทางของ chamber ในการ run ก็ต่างกัน อันนี้ติดใจเพราะแปลกอีกแหละค่ะ ที่ญี่ปุ่นหันซ้ายขวา แต่ฝรั่งจะหันบนล่าง (คือวางให้หลุมหยอดอยู่ด้านใกล้ตัว) แต่การวาง gel tank ทิศไหนไม่มีผลอะไรเพราะยังไงก็ต้องต่อขั้วบวกลบให้ถูกกับวาง gel ให้ DNA วิ่งให้ถูกทางเท่านั้น
6. เรื่องเก็บ gel ไว้ใช้ต่อนี่น่าประทับใจในความประหยัดของเค้านะคะ ส่วนที่เพิธเคยเห็นคนทำเหมือนกัน แต่รู้สึกจะเป็นเพราะความขี้เกียจมากกว่า และใช้สำหรับเช็คขนาด DNA เร็วๆเท่านั้น ที่แล็บ routine เค้าจะทิ้ง gel เลยตั้งแต่ถ่ายรูปเสร็จเพราะเค้าใช้วิธีเก็บรูปเข้าคอมพิวเตอร์
ต้องขอชมว่าบันทึกได้ละเอียดละออ และถามเหตุผลมาได้ดีมากค่ะ ตัวเองตอนทำรู้สึกว่าจะต้องมาหาอ่านเอาเองว่าอะไรใช้ทำไม เพราะคนทำ routine เค้ายุ่งๆแสดงให้ดูเฉยๆ
การย้อม EtBr โดยการผสมลงในเจลสะดวกนะคะแต่เสี่ยงต่อการปนเปื้อนโดยเฉพาะ chamber ที่ใช้ และไม่เหมาะกับการที่ต้องรันตัวอย่างที่ใช้เจลยาวๆ เพราะ EtBr มันก็จะเคลื่อนที่ลงมาด้วยทำให้อาจไม่เห็น band DNA ที่อยู่บนๆ
ส่วนเจลที่ใช้แล้วที่แล็บทิ้งไปเลยค่ะ เราเก็บแต่รูป เพราะยังไงๆก็ปนเปื้อน EtBr แล้ว แต่ก้อเคยได้ยินว่าบางแล็บ reuse โดยเค้าจะทำการรันให้ทุกสิ่งทุกอย่างตกเจลไปให้หมด โดยดูได้จากการส่องยูวี (ลำบากเนอะ..เตรียมใหม่ดีกว่า) แล้วค่อยนำมาหลอมใช้ต่อไป
ข้อมูลเป็นประโยชน์อย่างมากเลยคะ ขอบคุณมากๆคะ ^_____^
ขออนุญาตแสดงความคิดเห็น ในขั้นตอนที่ 5 นั้น ตรงขั้นตอนการ load ตัวอย่าง PCR Product ซึ่งผสมกับ loading dye 5:1 เจ้าตัว loading dye นั้นไม่ใช่สีย้อมนะครับ เป็นตัวที่จะทำให้การ load เจ้า PCR Product ลงไปที่ก้นหลุมโดยไม่ฟุ้งกระจาย และได้ผสมสี เช่น bromophenol blue, xylene cyanol FF, glycerol อีกทั้งเพื่อช่วยบอกระยะทางหรือช่วงที่ DNA วิ่งไปบน Gel electriphoresis ส่วนการย้อม DNAนั้นอยู่ในขั้นตอนการใช้ EtBr หรือ Sybr Gold ฯลฯ นะครับ เพื่อความชัดเจนของข้อมูลครับ